Физиология растений и генетика 2017, том 49, № 2, 174-178, doi: https://doi.org/10.15407/frg2017.02.174

Клеточная селекция с использованием катионов Ва2+ для отбора солеустойчивых линий пшеницы

Сергеева Л.Е., Бронникова Л.И.

  • Институт физиологии растений и генетики Национальной академии наук Украины 03022 Киев, ул. Васильковская, 31/17

На селективных средах, содержащих летальные для клеточных культур дозы катионов Ва2+, отобраны устойчивые линии пшеницы. Барийустойчивые клеточные линии тестировали в условиях прямого воздействия сульфатно-хлоридного и сульфатного засолений. Отобранные линии характеризовались комплексной устойчивостью к обоим типам солевого стресса.

На селективных средах, содержащих летальные для клеточных культур дозы катионов Ва2+, отобраны устойчивые линии пшеницы. Барийустойчивые клеточные линии тестировали в условиях прямого воздействия сульфатно-хлоридного и сульфатного засолений. Отобранные линии характеризовались комплексной устойчивостью к обоим типам солевого стресса.

Ключевые слова: пшеница, клеточная селекция, катионы Ва2+, солеустойчивость

Физиология растений и генетика
2017, том 49, № 2, 174-178

Полный текст и дополнительные материалы

В свободном доступе: PDF  

Цитированная литература

1. Sergeeva, L.E. (1991). The investigation of tobacco cell lines resistant to salt and water stresses and their regenerants. (Extended abstract of candidate thesis). Institute of Plant Physiology and Genetics NAS Ukraine, Kiev, Ukraine [in Russian].

2. Sergeeva, L.E. (2013). Cell selection with heavy metal ions for obtaining plant genotypes with combined resistance to abiotic stresses. Kiev: Logos [in Russian].

3. Sidorov, V.A. (1990). Plant biotechnology. Cell selection. Kiev: Naukova dumka [in Russian].

4. Pat. 44487, Ukraine, A01H1/04, A01H4/00, The method of selection plant cell lines resistant to salinity, Sergeeva, L.E. Publ 15.02.2002 [in Ukrainian].

5. Conner, A.J. & Meredith, C.P. (1985). Large scale selection of aluminum-resistant mutants from plant cell culture: expression and inheritance in seedlings. Theor. Appl. Genet., 71, pp. 159-165. https://doi.org/10.1007/BF00252050

6. Croughan, T.P., Stavarek, S.J. & Rains, D.W. (1978). Selection of a NaCl-tolerant line of cultured alfalfa cells. Crop. Sci., 18, No. 6, pp. 959-963. https://doi.org/10.2135/cropsci1978.0011183X001800060012x

7. Dix, P.J. & Street, H.E. (1975).Sodium chloride-resistant cultured cell lines from Nicotiana sylvestris and Capsicum annum. Plant Sci. Lett,. 5, No. 4, pp. 231-237. https://doi.org/10.1016/0304-4211(75)90017-6

8. Dracup, M. (1993). Why does in vitro cell selection not improve the salt tolerance of plants? In Randall, P.J. Delhaize, E., Richards, R.A. & Rana Munns (Eds). Genetic aspects of plant mineral nutrition (pp.137-142). Dordrecht: Kluwer Acad. Publ. https://doi.org/10.1007/978-94-011-1650-3_17

9. Fan, L.M., Wu, W.-H. & Yang, Y.-Y. (1999). Identification and characterization the inward K+ channel in the plasma membrane Brassica pollen protoplasts. Plant Cell Physiol., 40, No. 8, pp. 859-865. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.pcp.a029615

10. Gamborg, J.L., Miller, R.A. & Ojima, K. (1968). Nutrient requirement of suspension cultures of soybean roots. Exp. Cell Res., 509, pp. 151-158. https://doi.org/10.1016/0014-4827(68)90403-5

11. Maliga, P. (1984). Isolation and characterization of mutants in plant cell culture. Ann. Rev. Plant Physiol., 35, pp. 519-542. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.35.060184.002511

12. Rubio, F., Nieves-Cordones, M., Aleman, F. & Martinez, V. (2008). Relative contribution of AtHAK5 and AtHAK1 to K+ uptake in the high affinity range of concentrations. Physiol. Plant, 134, pp. 598-608. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.2008.01168.x

13. Wang, D.-M., Zhang, J.-L. & Flowers T.J. (2007). Low affinity Na+ uptake in the halophyte Suaeda maritime. Plant Physiol., 145, pp. 559-571. https://doi.org/10.1104/pp.107.104315